บทความน อาจต องการตรวจสอบต นฉบ บ ในด านไวยากรณ ร ปแบบการเข ยน การเร ยบเร ยง ค ณภาพ หร อการสะกด ค ณสามารถช วยพ ฒนาบทความไ

มิญชวิทยา (อังกฤษ: Histology) เป็นวิชาที่ศึกษาเกี่ยวกับจุลกายวิภาคศาสตร์ของเซลล์และเนื้อเยื่อ ของพืชหรือสัตว์ โดยการศึกษาจะใช้เครื่องมือที่เรียกว่า (microtome) ตัดเนื้อเยื่อให้บางเพื่อนำไปศึกษา (เตรียม specimen) จากนั้นนำไปส่องด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง หรือกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน โดยอาจใช้การย้อมสี (stained) เพื่อเพิ่มความสามารถในการแยกแยะความแตกต่างของเนื้อเยื่อ วิชา Histology จัดเป็นวิชาที่สำคัญของชีววิทยาและทางการแพทย์

A stained histologic specimen, sandwiched between a glass and coverslip, mounted on the stage of a light microscope.

ภาพเนื้อเยื่อ ปอดย้อมด้วยสี (Hematoxylin) และ (Eosin) ผู้ป่วยรายนี้มีอาการของโรคถุงลมโป่งพอง (emphysema)

จุลพยาธิวิทยา (อังกฤษ: Histopathology) เป็นการศึกษาเนื้อเยื่อที่เกิดโรคด้วยกล้องจุลทรรศน์ โดยเป็นเครื่องมือที่สำคัญของ เนื่องจากสามารถวินิจฉัยมะเร็งและโรคอื่นๆ ได้อย่างแม่นยำ แพทย์ที่ศึกษาทางด้านนี้โดยเฉพาะเรียกว่า ซึ่งจะศึกษาเนื้อเยื่อตัวอย่างและวินิจฉัยออกมาว่ามีความผิดปกติหรือไม่

นักวิทยาศาสตร์ที่เกี่ยวข้องกับ histological sections ประกอบด้วย "histotechnicians", histology technicians (HT), histology technologists (HTL), นักพยาธิวิทยา, นักวิทยาศาสตร์การแพทย์, เจ้าหน้าที่เทคนิคการแพทย์ และนักชีวเคมีทางการแพทย์ โดยวิทยาศาสตร์สาขานี้มีชื่อเรียกว่า histotechnology.

กระบวนการทางเทคนิค

การคงสภาพ

การคงสภาพด้วยฟอร์มัลดีไฮด์และสารเคมีอื่นๆ

สารคงสภาพใช้ป้องกันเนื้อเยื่อจากการเสื่อมสภาพและยังช่วยรักษาโครงสร้างแล้วส่วนประกอบต่างๆ ภายในเซลล์ (e.g., nucleus, endoplasmic reticulum, mitochondria). สารคงสภาพที่ใช้โดยทั่วไปสำหรับการเตรียมเนื้อเยื่อศึกษาด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบแสง คือ 10% บัฟเฟอร์ฟอร์มาลีน (4% ฟอร์มัลดีไฮด์ ใน ). For electron microscopy, the most commonly used fixative is , usually as a 2.5% solution in . These fixatives preserve tissues or cells mainly by irreversibly cross-linking proteins. The main action of these aldehyde fixatives is to cross-link amino groups in proteins through the formation of CH₂ () linkage, in the case of formaldehyde, or by a C5H10 cross-links in the case of glutaraldehyde. This process, while preserving the structural integrity of the cells and tissue can damage the biological functionality of proteins, particularly , and can also them to a certain extent. This can be detrimental to certain histological techniques. Further fixatives are often used for electron microscopy such as or

Frozen Section Fixation

เป็นวิธีการที่รวดเร็วสำหรับการรักษาสภาพเนื้อเยื่อตัวอย่าง และ ติดตั้งตัวอย่างเนื้อเยื่อ. โดยถูกใช้ในการวินิจฉัยเพื่อการผ่าตัดกำจัดเซลล์มะเร็ง วิธีนี้ใช้สำหรับการผ่าตัดเซลล์มะเร็งและหาขอบเขตภายหลังการผ่าตัดเซลล์มะเร็ง การแช่แข็งเนื้อเยื่อตัวอย่างจะใช้เครื่องมือที่เรียกว่า หลังจากที่เนื้อเยื่อที่ถูกแช่แข็งแล้วจะถูกสไลซ์ด้วยเครื่องมือตัดที่เรียกว่า , ทำการแช่แข็งและติดตั้งตัวอย่างเนื้อเยื่อบนกระจกสไลด์ สำหรับการย้อมสีตัวอย่างสามารถกระทำได้เช่นเดียวกับวิธีการติดตั้งตัวอย่างแบบอื่นๆ สำหรับเนื้อเยื่อบางชนิดก็ต้องใช้การย้อมสี (stained) แบบพิเศษ เช่น แอนติบอดี้ (antibody) ต้องใช้วิธีการที่เรียกว่า การย้อม

การดึงน้ำออกและแทรกซึม

เนื่อเยื่อจำเป็นต้องถูกฝังอยู่ในวัสดุที่แข็งพอเพื่อให้สามารถตัดออกมาเป็นเซคชั่นได้ โดยทั่วไป ความหนา 5 μm (ไมโครเมตร; 1000 ไม่โครเมตร = 1 มิลลิเมตร) สำหรับกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง และ 80-100 nm (นาโนเมตร; 1,000,000 นาโนเมตร = 1 มิลลิเมตร) สำหรับกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน สำหรับกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงจะใช้พาราฟินเป็นหลัก เนื่องจากเป็นสารที่ไม่ละลายน้ำและเนื่อเยื่อในสิ่งมีชีวิตมักประกอบด้วยน้ำ ในขั้นแรกจึงต้องมีการดึงน้ำออกจากเนื่อเยื่อ โดยการนำเนื้อเยื่อผ่านเอทานอลความเข้มข้นจากต่ำไปสูง ตามด้วยสารเคลียริ่ง โดยทั่วไปคือเพื่อนำแอลกอฮอล์ออกจากเนื้อเยื่อ และทำให้เนื้อเยื่อใส, สุดท้ายคือพาราฟินซึ่งจะเข้าไปแทนทีไซลีนในเนื้อเยื่อและทำให้เนื้อเยื่อมีความแข็งพอ. อย่างไรก็ตาม พาราฟิน ไม่สามารถทำให้เนื้อเยื่อแข็งพอที่จะตัดเซคชั่นให้บางสำหรับกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนได้ จึงใช้วัสดุเรซินแทน. Epoxy resins are the most commonly employed embedding media, but acrylic resins are also used, particularly where is required. Thicker sections (0.35μm to 5μm) of resin-embedded tissue can also be cut for light microscopy. Again, the immiscibility of most epoxy and acrylic resins with water necessitates the use of dehydration, usually with ethanol.

การฝังเนื้อเยื่อ

After the tissues have been dehydrated and infiltrated with the embedding material they are ready for embedding. During this process the tissue samples are placed into moulds along with liquid embedding material which is then hardened. This is achieved by cooling in the case of paraffin wax and heating in the case of the epoxy resins (curing). The acrylic resins are polymerised by heat, ultraviolet light or chemical catalysts. The hardened blocks containing the tissue samples are then ready to be sectioned.

Formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) tissues may be stored indefinitely at room temperature, and nucleic acids (both DNA and RNA) may be recovered from them decades after fixation, making FFPE tissues an important resource for historical studies in medicine.

Embedding can also be accomplished using frozen, non-fixed tissue in a water-based medium. Pre-frozen tissues are placed into moulds with the liquid embedding material, usually a water-based glycol or resin, which is then frozen to form hardened blocks.

การตัดเซคชั่น

For light microscopy, a glass knife mounted in a is used to cut 10--thick tissue sections which are mounted on a glass . For transmission electron microscopy, a diamond knife mounted in an is used to cut 50-nanometer-thick tissue sections which are mounted on a 3--diameter copper grid. Then the mounted sections are treated with the appropriate .

Frozen tissue embedded in a freezing medium is cut on a microtome in a cooled machine called a .

Biological tissue has little inherent contrast in either the light or electron microscope. Staining is employed to give both contrast to the tissue as well as highlighting particular features of interest. Where the underlying mechanistic chemistry of staining is understood, the term is used. and (H&E) is the most commonly used light microscopical stain in histology and histopathology. Hematoxylin stains nuclei blue; eosin stains the cytoplasm pink. Uranyl acetate and lead citrate are commonly used to impart contrast to tissue in the electron microscope.

Special staining: There are hundreds of various other techniques that have been used to selectively stain cells and cellular components. Other compounds used to color tissue sections include , oil red o, Congo red, fast green FCF, silver salts, and numerous natural and artificial that were usually originated from the development dyes for the textile industry.

refers to the science of using chemical reactions between laboratory chemicals and components within tissue. A commonly performed histochemical technique is the Perls reaction, used to demonstrate iron deposits in diseases like hemochromatosis.

Histology samples have often been examined by radioactive techniques. In a slide (sometimes stained histochemically) is X-rayed. More commonly, is used to visualize the locations to which a radioactive substance has been transported within the body, such as cells in (undergoing DNA replication) which incorporate tritiated , or sites to which radiolabeled nucleic acid probes bind in . For autoradiography on a microscopic level, the slide is typically dipped into liquid nuclear tract emulsion, which dries to form the exposure film. Individual silver grains in the film are visualized with .

Recently, antibodies are used to specifically visualize proteins, carbohydrates, and lipids: this is called , or when the stain is a molecule, . This technique has greatly increased the ability to identify categories of cells under a microscope. Other advanced techniques, such as nonradioactive in situ hybridization, can be combined with immunochemistry to identify specific DNA or RNA molecules with fluorescent probes or tags that can be used for immunofluorescence and amplification (especially alkaline phosphatase and ). and are used to detect fluorescent signals with good intracellular detail. are increasingly used to capture histological and histopathological image

Common laboratory stains

Fungi—black

สีย้อม	การใช้งาน	นิวเคลียส	ไซโตพลาสซึม	เซลล์เม็ดเลือดแดง (RBC)	เส้นใยคอลลาเจน	Specifically stains
	สีย้อมทั่วไป ใช้คู่กับ Eosin	Blue	N/A	N/A	N/A	กรดนิวคลีอิค—น้ำเงิน Blue eER (ergastoplasm) —blue
	สีย้อมทั่วไป ใช้คู่กับ Haematoxylin	N/A	ชมพู	ส้ม/แดง	ชมพู	เส้นใยอิลาสติก—ชมพู เส้นใยเรติคูลา—ชมพู
	General staining	Blue	Blue	Blue	Blue	Mast cells granules—purple
	Connective tissue	Black	Red/pink	Red	Blue/green	Cartilage—blue/green Muscle fibers—red
Mallory's trichrome stain	Connective tissue	Red	Pale red	Orange	Deep blue	Keratin—orange Cartilage—blue Bone matrix—deep blue Muscle fibers—red
	Elastic fibers	Blue/black	N/A	N/A	N/A	Elastic fibers—blue/black
	Distinguishing cells from extracellular components	Red/purple	Pink	Red	Blue	Muscle fibers—red Cartilage—blue Bone matrix—blue
	Reticular fibers, nerve fibers, fungi	N/A	N/A	N/A	Reticular fibers—brown/black Nerve fibers—brown/black
	Blood cells	Bluish/purple	Bluish/gray	Red/pink	N/A	Neutrophil granules—purple/pink Eosinophil granules—bright red/orange Basophil granules—deep purple/violet Platelet granules—red/purple
	Elastic fibres	Deep blue [or crazy red]	N/A	Bright red	Pink	Elastic fibres—dark brown Mast cells granules—purple Smooth muscle—light blue
(PAS)	Basement membrane, localizing carbohydrates	Blue	N/A	N/A	Pink	Glycogen and other carbohydrates—magenta

Table sourced from Michael H. Ross, Wojciech Pawlina, (2006). Histology: A Text and Atlas. Hagerstown, MD: Lippincott Williams & Wilkins. ISBN .{{}}: CS1 maint: extra punctuation () CS1 maint: multiple names: authors list ()

The and are useful in identifying neurons.

Alternative techniques

Alternative techniques include . The tissue is frozen and cut using a . Tissue staining methods are similar to those of wax sections. Plastic embedding is commonly used in the preparation of material for electron microscopy. Tissues are embedded in epoxy resin. Very thin sections (less than 0.1 micrometer) are cut using diamond or glass knives. The sections are stained with electron dense stains (uranium and lead) so that they can possibly be seen with the electron microscope.

History

In the 19th century, histology was an academic discipline in its own right. The 1906 in Physiology or Medicine was awarded to histologists and . They had dueling interpretations of the neural structure of the brain based in differing interpretations of the same images. Cajal won the prize for his correct theory and Golgi for the staining technique he invented to make it possible.

การแบ่งประเภทเนื้อเยื่อของสัตว์ตามหลักมิญชวิทยา

แบ่งได้เป็น 4 ประเภทคือ กล้ามเนื้อ, ประสาท, เนื้อเยื่อเกี่ยวพัน, และเยื่อบุผิว เนื่อเยื่ออื่นจะถูกจัดอยู่ในสี่ประเภทพื้นฐานเหล่านี้ (เช่น เซลล์เม็ดเลือดจะถูกจัดอยู่ในประเภท เนื้อเยื่อเกี่ยวพัน เนื่องจากถูกผลิตมาจากไขกระดูก).

Epithelium: เยื่อบุผิวอวัยวะต่างๆ เช่น ต่อม, ลำไส้, ผิวหนัง, ตับ, ปอด, ไต
Endothelium: เยื่อบุผนังหลอดเลือด และท่อน้ำเหลือง
: เยื่อบุผนังช่องอก และช่องท้อง
: เซลล์ที่อยู่ระหว่างอวัยวะต่างๆ เซลล์ไขมัน เซลล์กล้ามเนื้อ กระดูก กระดูกอ่อน เส้นเอ็น
: เม็ดเลือดแดงและเม็ดเลือดขาว รวมไปถึงเซลล์ที่พบในต่อมน้ำเหลืองและม้ามด้วย
: เซลล์ทั้งหมดในระบบประสาท
: เซลล์สืบพันธุ์ ( ในเพศผู้, ในเพศเมีย)
Placenta: an organ characteristic of true mammals during pregnancy, joining mother and offspring, providing endocrine secretion and selective exchange of soluble, but not particulate, blood-borne substances through an apposition of uterine and trophoblastic vascularised parts
Stem cells: เซลล์ต้นกำเนิด ที่สามารถเจริญเป็นเซลล์ทั้งหมดข้างต้น

เนื้อเยื่อจากพืช เชื้อรา จุลชีพต่างๆ สามารถศึกษาด้วยวิธีทางมิญชวิทยาเช่นกัน แต่โครงสร้างและลักษณะของเซลล์จะแตกต่างจากเซลล์สัตว์

Related sciences

Cell biology is the study of living cells, their DNA and RNA and the proteins they express.
Anatomy is the study of organs visible by the naked eye.
Morphology studies entire organisms.

Artifacts

Artifacts are structures or features in tissue that interfere with normal histological examination. These are not always present in normal tissue and can come from outside sources. Artifacts interfere with histology by changing the tissues appearance and hiding structures. These can be divided into two categories:

Pre-histology

These are features and structures that have being introduced prior to the collection of the tissues. A common example of these include: ink from tattoos and freckles (melanin) in skin samples.

Post-histology

Artifacts can result from tissue processing. Processing commonly leads to changes like shrinkage, color changes in different tissues types and alterations of the structures in the tissue. Because these are caused in a laboratory the majority of post histology artifacts can be avoided or removed after being discovered. A common example is mercury pigment left behind after using to fix a section.

อ้างอิง

ศัพท์บัญญัติราชบัณฑิตยสถาน 2017-07-15 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน. เรียกข้อมูลวันที่ 19 กพ. 2552.

Merck Source (2002). Dorland's Medical Dictionary. Retrieved 2005-01-26. (อังกฤษ)
Stedman's Medical Dictionaries (2005). Stedman's Online Medical Dictionary 2009-08-08 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน. Retrieved 2005-01-26. (อังกฤษ)

ดูเพิ่ม

แหล่งข้อมูลอื่น

Histology Protocols 2010-12-21 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน (อังกฤษ)
Immunohistochemistry - In Situ Hybridization (อังกฤษ)
Histoweb 2010-12-26 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน (อังกฤษ)
SIU SIM Histology (อังกฤษ)
Visual Histology Atlas 2019-03-11 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน (อังกฤษ)
Histology Glossary (อังกฤษ)
Histology Group of Victoria Incorporated 2019-03-15 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน (อังกฤษ)
Histology Photomicrographs

บทความกายวิภาคศาสตร์นี้ยังเป็น คุณสามารถช่วยวิกิพีเดียได้โดยการเพิ่มเติมข้อมูล

บทความชีววิทยานี้ยังเป็น คุณสามารถช่วยวิกิพีเดียได้โดยการเพิ่มเติมข้อมูล

[royin-1] ศัพท์บัญญัติราชบัณฑิตยสถาน 2017-07-15 ที่ เวย์แบ็กแมชชีน. เรียกข้อมูลวันที่ 19 กพ. 2552.